pleurote afrique congo burkina togo

Introduction

Les pleurotes sont des champignons comestibles cultivés dans le monde entier, surtout en Asie du Sud-Est, en Inde, en Europe et en Afrique. La Chine produit 64 % de tous les champignons comestibles dans le monde et 85 % de tous les pleurotes dans le monde sont produits en Chine. Le pleurote est la troisième plus grosse production commerciale de champignon dans le monde ; bien que Sánchez ait rapporté que P. ostreatus est la deuxième plus grande après le Agaricus bisporus sur le marché mondial. La culture des champignons est le cinquième plus grand secteur agricole en Chine avec une valeur de 24 milliards USD et un taux de croissance de 10% par an depuis 30 ans. Les pleurotes huîtres  poussent naturellement sur du bois pourri. L’intérêt croissant et la consommation du pleurote sont dus en grande partie à ses propriétés gustatives, médicinales et nutritionnelles. De grandes quantités de sous-produits lignocellulosiques inutilisés sont disponibles dans les zones tropicales et subtropicales. Ces sous-produits sont laissés à pourrir dans le champ ou sont éliminés par incinération. L’utilisation de ces sous-produits pour la culture de champignons à l’aide de technologies disponibles localement pourrait être l’une des solutions pour transformer ces déchets non comestibles en biomasse comestible acceptée et de grande valeur marchande.

Les substrats usés provenant de la culture de champignons peuvent également être utilisés comme compléments alimentaires pour les animaux, fournissant éventuellement des ressources supplémentaires pour l’alimentation animale. la durée de croissance est plus courte pour P. ostreatus que pour les autres champignons comestibles. Le substrat utilisé pour leur culture ne nécessite pas de stérilisation, seulement la pasteurisation, qui est moins coûteuse. Un nombre élevé des substrats peuvent être utilisés pour faire fructifier le pleurote, ce qui augmente la rentabilité.

P. ostreatus exige peu de contrôles environnementaux, et leurs fructifications sont rarement attaquées par des maladies et des ravageurs. La culture de P. ostreatus est simple et bon marché. Par conséquent, c’est meilleur champignon à produire pour les agriculteurs non qualifiés. La culture des champignons fournit un emploi alternatif et contribue à la sécurité alimentaire des groupes ruraux défavorisés, en particulier les femmes et les personnes âgées en Tanzanie, améliorant ainsi leurs moyens de subsistance. L’expansion de la culture des champignons fait baisser le prix des champignons et, par conséquent, elle protège l’insécurité alimentaire.

Debre Berhan est situé dans la zone administrative de Shewa Nord, région d’Amhara et se trouve à 130 km au nord de la capitale, Addis Abeba. Debre Berhan est la ville la plus froide et la plus venteuse du pays avec une altitude de 2 850 mètres au-dessus du niveau de la mer. Selon la Banque mondiale, Shewa Nord est exposée à un risque élevé de sécheresse et la zone a donc besoin d’une pratique agricole alternative peu affectée par le changement climatique.

La culture des pleurotes est la meilleure à cet égard puisqu’elle ne nécessite pas de sol fertile et de pluie naturelle, contrairement à d’autres cultures en Ethiopie. Le but de cette recherche est d’évaluer les conditions optimales pour la culture de Pleurotus ostreatus en utilisant les substrats, matériaux et technologies disponibles localement.

Matériaux et méthodes

Gélose, dextrose, pommes de terre (PDA)

Le PDA a été préparé à partir de pommes de terre fraîches disponibles localement, d’agar et de glucose produits industriellement. Environ 200 g de pommes de terre ont été lavées, tranchées et placées dans 1 litre d’eau bouillante dans un récipient en laiton disponible localement et bouillies pendant 15 minutes. Le bouillon de pommes de terre a été filtré à l’aide d’un morceau de tissu. Du glucose (20g) et 20g de gélose ont été ajoutés et le volume a été ajusté à un litre en ajoutant de l’eau. Le flacon a été bouché avec du coton absorbant. Le mélange d’agar et les boites de Petri ont été stérilisés dans un autocuiseur pendant 30 minutes. La gélose (25 ml) a été versée avec soin et de manière aseptique dans les boites de Petri près d’une flamme et, à titre de comparaison, la hotte à flux laminaire a également été utilisée. Après refroidissement, le PDA a été utilisé pour P. ostreatus et incubé à 25° C et à température ambiante.

Production du blanc

Les grains, comme le sorgho, le blé et le blé malté séché, sont nettoyés manuellement pour enlever la matière inerte, le chaume et les débris. Les grains nettoyés sont trempés dans l’eau du robinet pendant la nuit. Le grain est bouilli peu de temps après son trempage pour une préparation urgente de blanc. Par la suite, les grains trempés sont égouttés et l’excès d’eau enlevé, les additifs suivants sont ajoutés : son de blé à raison de 10 % et  craie (CaCO3) à raison de 2 % ajoutés sur la base du poids sec des grains. Les additifs sont soigneusement et uniformément mélangés aux grains. Le milieu de grain est versé dans des bocaux trouvés localement. Les bocaux sont fermés à l’aide d’ouate. Les bocaux contenant du substrat son stérilisées à l’aide d’un autocuiseur sous pression et laissées à refroidir pendant plus de six heures. Le substrat en bouteilles est immédiatement inoculé avec une culture de mycélium de P. ostreatus maintenue sur PDA. Ensuite, il est incubé à 25° C sans lumière pendant 10-15 jours jusqu’à ce que le mycélium recouvre complètement les grains. Il est secoué tous les quatre jours pour répartir le mycélium dans le grain jusqu’à la fin de la phase de croissance. Alternativement, les grains sont mis à incuber à des températures ambiantes variables (12-19° C).

Préparation du support

De la paille de blé, de la sciure de bois et de la paille de sésame ont été recueillis dans les environs de Debre Birhan et trempés dans l’eau du robinet pendant la nuit pour humidifier et rendre le substrat apte à la colonisation par le mycélium de pleurote. Alternativement, 3 % de gypse, de craie ou de CaCO3 sont ajouté à 10 % de son de blé. Tout est mélangés puis ajoutés aux substrats. En plus de différents substrats, différents suppléments ont également été évalués pour observer leur impact sur la croissance des champignons. Du tourteau de graines oléagineuses, du son de blé et de la bouse de vache (10 % sur une base sèche) ont été ajoutés à 90 % de paille de blé et de sciure de bois séparément pour assurer une distribution uniforme des matières. Ensuite, les substrats et les suppléments ont été bien mélangés après que les suppléments aient été mélangés séparément.

La croissance de P. ostreatus  sur des déchets organiques

De nombreux déchets de papier sont brûlés chaque mois à l’Université Debre Berhan. C’est pourquoi on a évalué la possibilité d’utiliser des vieux papiers comme support pour la culture des champignons. Différentes quantités de vieux papiers ont été mélangées à de la sciure de bois. La sciure (100 %) a été utilisée comme témoin. En outre, 10 % de son de blé a été ajouté après avoir été mélangé avec 3 % de gypse. Enfin, la croissance et le rendement ont évalués en mesurant le diamètre du pied des champignons. Le P. ostreatus a été inoculée et placée à température ambiante. Le gabi est, le vêtement traditionnel éthiopien fait de coton tissé et beaucoup de gabi usagés sont jetés chaque année dans le pays. Des essais ont été effectués pour cultiver le P. ostreatus dans un substrat de gabi usagé. 100 %, 75 %, 50 %, 25 %, 25 % et 0 % de sciure de bois ont été ajoutés à 0 %, 25 %, 50 %, 75 % et 100 % de déchets de gab. De plus, 10 % de son de blé et 3 % de gypse ont été ajoutés. Le pourcentage a été calculé sur une base sèche. Les substrats ont été pasteurisés à l’aide d’un baril d’huile. Après refroidissement pendant une heure, les substrats ont été inoculés de P. ostreatus et placé à température ambiante.

Réutilisation des substrats

Les substrats qui ont été utilisés pour la culture de P. ostreatus ont été réutilisés pour d’autres cultures. Les substrats ont été utilisés de deux façons. Certains substrats ont été réutilisés sans aucun apport pour la culture des champignons. Pour certains autres, 10% de son de blé et 2% de gypse ont été ajoutés aux substrats utilisés. De plus, ils ont été pasteurisés à la vapeur et stérilisés à l’autoclave pour évaluer l’effet des contaminants présents dans les substrats utilisés.

Désinfection

Tout le matériel a été désinfecté avec de l’alcool à 70 %. La tige du mélangeur a été stérilisée avec un chalumeau fabriquée localement. Ensuite, les substrats pasteurisés ont été inoculés avec 4-6% de blanc de P. ostreatus de façon aseptique et ont été mis à incuber à 25° C ou à température ambiante.

Effet de la taille des pores

Après avoir rempli les sacs de plastique de substrat , on a fait des trous de différentes tailles pour évaluer l’effet de l’aération, de la contamination et de la perte d’humidité. 2 trous de 16.18mm et 2 de 28.16mm ont été réalisés à l’aide de fraises circulaires de diamètre différent. dans un cas, les trous ont été faits après que les sacs aient été remplis. Dans l’autre cas, 2 trous de 16.18mm 2 ou 2 trous de 28.16mm ont été faits avant que le substrat ne soit placé sur les sacs. Celui avec trou d’épingle a été arrangé de deux façons. Tout d’abord, il a été attaché au sommet et un deuxième bouchon de coton a été attaché au plastique au sommet pour permettre plus d’aération.

Effet de la température

Comme le climat de Debre Birhan est relativement froid, surtout de fin septembre à janvier, l’effet de la température ambiante sur le rendement des huîtres a été évalué puisque les fermiers des zones rurales ne sont pas en mesure d’acheter des incubateurs. Ici, la méthode de la bouteille a été utilisée en raison de sa facilité de manipulation dans l’incubateur. Des quantités égales de substrats ont été mises dans deux bouteilles. Après l’inoculation, on en a placé un dans l’incubateur à 25° C et l’autre a été laissé à température ambiante. La température variaant de 3° C à 19° C. Chaque semaine, la croissance et le développement du mycélium de l’huître ont été physiquement observés et évalués.

Initiation de la mise à fruit

La lumière et la température ont été utilisées pour amorcer la formation de têtes d’épingle après que le mycélium ait complètement envahit le substrat. Le mycélium en croissance qui a été placé dans l’obscurité a été amené dans une zone éclairée ; par contre, les bouteilles et les sacs en plastique qui ont été placés dans l’incubateur à 25° C ont été placés à température ambiante. La température ambiante, au moment de l’expérience, variait de 3° C à 19° C.

Fructification

Lorsque le substrat a été complètement envahit par le mycélium, le tampon de coton a été enlevé. Le haut du sac en plastique a été partiellement enlevé. De plus, la partie du plastique qui recouvrait le primordia a également été enlevée sans endommager le mycélium. Les sacs en plastique qui contiennent des primordia ont été arrosés trois fois par jour pour augmenter l’humidité relative.

Rendement biologique (rendement)

L’efficacité biologique est un outil de mesure utilisé pour connaître le potentiel de croissance du pleurote.

Résultats et discussion

Culture de P. ostreatus sur PDA

Le PDA est le support le plus simple et le plus populaire pour la culture du mycélium des champignons les plus cultivés. P. ostreatus a été cultivé avec succès sur PDA. le pleurote a complètement recouvert les boites de Petri en 9 jours et sa couleur et son aspect ressemblent à du pur coton (fig 1). Le mycélium doit être blanc. Si des mycéliums jaunes, bleus, verts ou gris se forment à d’autres endroits à la surface, il s’agit de contaminants fongiques. Une croissance crémeuse et brillante indique souvent une contamination bactérienne. P. ostreatus est relativement lent lorsqu’on le compare aux moisissures et autres champignons.

blanc pleurote boite petri

Préparation du blanc

Une fois qu’une culture pure de champignons est obtenue, le blanc peut être obtenu à partir de cette culture. Le blanc est le mycélium du champignon sur un matériau solide. Fonctionnellement, c’est l’inoculum de départ de la culture des champignons. Des matériaux solides tels que la sciure de bois, les grains entiers de céréales, le maïs et les épis de maïs déchiquetés, etc. sont utilisés pour la préparation du blanc.

P. ostreatus a été cultivé sur du blé de sorgho, et le blanc de blé malté séché a poussé sans montrer de préférence significative entre eux. Le sorgho et le blé sont bon marché sur le marché de Debre Birhan, il est donc économique de les utiliser pour produire du blanc de P. ostreatus. Le choix du grain se fait en tenant compte de plusieurs facteurs tels que son prix, sa facilité d’approvisionnement et la taille du grain. Dans certaines régions d’Afrique, le sorgho est plus disponible et moins cher que le maïs. De plus, l’espace entre les grains blé ou de sorgho est tout à fait suffisant pour la circulation de l’air. Cependant, si le teff était utilisé, il n’y aurait pas de bonne aération et les graines de teff seraient trop serrées entre elles pendant la stérilisation. C’est pourquoi P. ostreatus n’a pas très bien poussé dans les substrats qui contiennent trop de son de blé, surtout au fond du récipient. L’ensemble des céréales inoculées mises en incubateur à 25° C étaient recouverts de mycélium de P. ostreatus dans les 14 jours. Cependant, ceux qui ont été placés hors incubateur ont mis 22 jours pour coloniser les céréales. Par conséquent, il est possible de préparer le blanc sans incubateur, en le laissant simplement à température ambiante, même si cela prend relativement plus de temps. Le sorgho a besoin de plus de temps pour absorber la même quantité d’eau que le blé. C’est pourquoi le sorgho a été bouilli, mais le sorgho ne doit pas être éclaté parce que le sorgho éclaté sera trop tassé ce qui réduit la circulation d’air. Oei a comparé l’avantage et le désavantage des grains par rapport à la sciure de bois ou au bâton de bois. Le principal avantage des grains est qu’ils sont très nutritifs pour les champignons et forment facilement des amandes. Les grains peuvent facilement être répartis sur le substrat. Le principal inconvénient est qu’il fournit également un substrat optimal pour d’autres organismes. Les risques de contamination sont donc beaucoup plus élevés par rapport à la sciure de bois ou aux l’insémination de chevilles de bois. Le taux d’humidité du grain doit être d’environ 50%. Dawit a déclaré que la teneur en eau de 40 à 60 % est optimale pour la fabrication du blanc. Dans notre cas, la teneur en eau était de 52 %. Si la teneur en eau est plus élevée, la croissance des mycéliums peut être plus rapide, mais le danger de l’apparition de bactéries augmente. Si elle est plus sèche que 35 %, la croissance des mycéliums sera lente. Pour obtenir une bonne qualité de blanc, le plus important est la qualité des inoculums. Les inoculums doivent être frais et purs. Si les inoculums sont conservés au réfrigérateur, ils doivent être activés avant d’être utilisés pour la production de blanc.

Substrats

pleurote

La culture des champignons diffère de l’agriculture conventionnelle sur un point important. Le sol dans le sol est le substrat pour la production des cultures mais les champignons poussent sur des déchets agro-industriels lignocellulosiques. L’huître peut pousser sur de nombreux déchets agricoles que l’on trouve autour de nous. La paille et la sciure de bois ont été utilisées comme substrats pour P. ostreatus. Il n’y avait pas de différence d’efficacité biologique significative sur les substrats (tableau 1). Dawit et Oei ont fait remarquer que Pleurotus peut pousser sur des pailles de blé et d’orge. Le taux d’humidité des substrats variait de 69,8 % à 74,5 %. Le pH de la paille avant l’ajout de craie et de gypse était de 5,8, peut-être à cause des acides produits par les microbes dans les substrats pendant le trempage. Cependant, le pH est passé à 6,9 lorsque la craie a été ajoutée. Ici, le lavage est essentiel pour neutraliser le pH du substrat. De plus, la craie neutralise l’abaissement du pH. De plus, la craie et le gypse servent de tampon. De plus, le Ca obtenu à partir du gypse (CaSO4) et de la craie (CaCO3) neutralise l’acide oxalique produit pendant la croissance mycélienne. Le rendement le plus élevé est observé à pH 7 même s’il n’y a pas de différence de rendement significative à pH 6-8. Cependant, l’efficacité biologique, le rendement biologique et le rendement économique ont augmenté avec l’augmentation des niveaux de pH jusqu’à 5,04, puis diminué. Au contraire, Nwokoye et al. ont montré que P. ostreatus pouvait croître de façon optimale à un pH de 9.  P. ostreatus n’a montré aucune différence dans le rendement lorsque différents tampons comme le gypse, la craie et le CaCO3 pur étaient utilisés. Cependant, il y avait une différence de pH après leur ajout (tableau 2). Les suppléments sont des additifs qui augmentent les rendements en apportant des nutriments spécifiques pour la croissance du mycélium. Cependant, les suppléments augmentent le risque de contamination d’au moins 25 % puisque les suppléments fournissent également de bons nutriments à d’autres micro-organismes. M. Dawit a également déclaré que les suppléments modifient les conditions physiques des substrats plus propices à la culture des champignons. L’ajout de suppléments (balle de riz) aux déchets de papier augmente considérablement la course du blanc, la formation des têtes, la formation du corps du fruit et le rendement en champignons. De même, la culture du pleurote sur paille de blé et bagasse modifiée avec des effluents de distillerie donne de meilleurs résultats que sur des substrats sans effluents de distillerie. Les effets du son de blé, du tourteau de graines oléagineuses (fig. 2) et de la bouse de vache sur la croissance ont été évalués et il a été constaté que le tourteau de graines oléagineuses donne un rendement maximal (tableau 1 et fig. 2). De même, Ruiz-Rodriguez et al. ont constaté que le rendement de P. ostreatus augmentait sur les substrats avec une supplémentation en déchets de moulins à huile sans affecter les paramètres de culture. La réduction du rendement du fumier de vache pourrait être due à la contamination puisque les substrats pasteurisés contenant du fumier de vache étaient partiellement contaminés par la moisissure verte… De même, Baysal et al. ont proposé que la réduction du rendement de P. ostreatus  lors de l’utilisation de tourbe et de fumier de poulet pourrait être due à la forte teneur en azote du substrat.

Les substrats utilisés pour la culture de P. ostreatus ont été réutilisés pour d’autres cultures. Comme l’indique le tableau 1, les substrats réutilisés qui contenaient des suppléments présentaient une meilleure croissance que les substrats pasteurisés et stérilisés. La diminution du rendement du substrat réutilisé est due au fait que P. ostreatus est le principal décomposeur. Les substrats réutilisés étaient très mous et facilement réduits en petits morceaux. Par conséquent, l’aération dans les substrats réutilisés sera relativement inférieure à celle des substrats d’origine. En outre, l’efficacité biologique de P. ostreatus a été évaluée à l’aide de déchets de papier et de gabi or il a été constaté que les déchets de papier et de gabi étaient meilleurs que la paille de blé (fig 3).

Afin de déterminer pourquoi le gabi et les vieux papiers donnaient un rendement maximal, la capacité de rétention d’humidité des substrats a été évaluée et les vieux papiers et le gabi avaient une grande capacité de rétention d’eau. Par conséquent, l’une des raisons d’un rendement élevé P. ostreatus dans le gabi et les vieux papiers pourrait être sa grande capacité de rétention d’eau. La culture de P. ostreatus sur papier et carton de bureau déchiquetés a produit plus de biomasse comestible que d’autres résidus lignocellulosiques.

Effet de la taille des trous

Des trous de 16,18 mm2 et 28,16 mm2 ont été percés sur des sacs de plastique pour évaluer l’effet de l’aération, de la contamination et de la perte d’humidité. Les sacs de substrat en plastique avec des trous de 16,18 mm2 trous ont été bien colonisés par P. ostreatus . Toutefois, le rendement a été plus faible dans les sacs avec trous de 16,18 mm2 (tableau 1). Dans un sac plastique avec trous de 28,16 mm, 2 zones autour des trous n’ont pas été colonisées et ont été contaminées par des moisissures. L’incapacité de coloniser peut être due à une grande perte d’humidité puisque le trou est assez grand.

Effet de la température

Les substrats dans la bouteille placée dans l’incubateur à 25° C ont été colonisés par P. ostreatus en 15 jours alors que celui mis à la plage à une température variant de 3 à 19° C a été colonisé en 21 jours. À une température inférieure à 14° C, la croissance de P. ostreatus s’est avérée si lente qu’elle ne pouvait pas donner de primordia en 28 jours. Au lieu de cela, il a fallu 46 jours pour la formation des têtes à une température inférieure à 14° C et le rendement était également très faible (tableau 1). Pour augmenter la température, la pièce était chauffée au charbon de bois. Pour la plupart des champignons, l’invasion mycélienne est favorisée à température élevée et la formation du corps du fruit est relativement plus faible. D’autre part, Alam et al. ont étudié que la croissance maximale est enregistrée à 25° C et la plus faible à 15° C et qu’aucune différence significative n’est observée entre 25° C et 30° C. Par conséquent, la température comprise entre 25 et 30° C est la meilleure pour la croissance mycélienne du P. ostreatus. Toutefois, les champignons comestibles cultivés entre 15 et 20° C présentent une meilleure qualité et durabilité que ceux cultivés à 25° C. De plus, P. ostreatus pousse plus rapidement à 30 ° C. En général, le rendement de P. ostreatus diminue lorsque la température diminue dans différentes zones climatiques du Pakistan.

Déclenchement de la pousse

Les changements de lumière et de température ont été utilisés pour faciliter la formation des  têtes. L’ajustement de l’humidité et de la concentration de CO2 est également essentiel. Tous les pleurotes ont besoin de lumière pour le bon développement du chapeau. Habituellement, il y a assez de lumière pour P. ostreatus s’il est possible de lire un journal dans la salle de culture. Les têtes sont apparues en 26-31 jours. P. ostreatus a fini de coloniser en 17-20 jours sur différents substrats et le temps de formation des têtes a été noté entre 23-27 jours.

De plus, la température joue un rôle très important dans la formation de la tête. C’est pourquoi les évolutions des têtes ont échoué à une température inférieure à 11° C. De plus, l’humidité doit être très élevée pendant la formation des primordia. Pour y parvenir, le mycélium a été arrosé d’eau 3 fois par jour. Oei a déclaré que l’humidité au moment de l’induction doit être ≥ 90%.

Récolte

Lors du premier essai, seule la première volée a été récoltée et la 2 ème  volée et les suivantes ont échouées. Ce qui est le plus important pour le 2 ème, 3 ème et 4 ème volée, c’est l’humidité. De plus, la température a également affecté nos 2 ème, 3 ème et 4 ème volées (données non montrées). Contrairement à beaucoup d’autres champignons dont le rendement diminue continuellement à chaque volée, P. ostreatus présente un profil différent. Plus de rendements ont été trouvés lors de la deuxième volée (tableau 1). La récolte la plus élevée du champignon est obtenue pendant la deuxième et la troisième volée. En général, une récolte de champignons à quatre volées est la plus économique mais il n’est pas sage de faire travailler le substrat plus de 90 jours, car le rendement diminue considérablement. Un bon contrôle de l’humidité pendant la culture est très important pour tous les types de champignons. La teneur en humidité des milieux de culture des champignons est un facteur très important ; par conséquent, la valeur appropriée de la teneur en humidité favorise la croissance, tandis que les valeurs supérieures ou inférieures ont un effet négatif sur la croissance. Il est bon de maintenir un taux d’humidité élevé (80 à 90%) en pulvérisant de l’eau plusieurs fois par jour.

Tableau 2 :Effet du tampon sur le substrat de paille de blé.

CONCLUSIONS

L’humidité relative, l’aération, la température et la contamination sont les facteurs les plus importants lors de l’ostréiculture à Debre Berhan en utilisant les substrats, matériaux et technologies disponibles localement. Même si le taux de frai des huîtres atteint son maximum à 25° C, il est possible de le cultiver à basse température. Le séchage des substrats réduit considérablement le rendement, c’est pourquoi la pulvérisation d’eau est obligatoire. Pour induire les 2 ème, 3 ème et 4 ème volée, Il est très important de recouvrir les substrats de plastique pour garder le substrat humide. Les déchets de gabi et de papier peuvent être utilisés comme substrat séparément ou en mélange avec de la sciure de bois. Généralement, P. ostreatus peut être cultivée à Debre Berhan avec du matériel disponible localement sans utiliser d’équipement de laboratoire sophistiqué pour la production de blanc.

3 Commentaires

  1. c’est vrai si la culture reste très artisanale avec peu d’investissement, peu optimisée mais si lorsque la culture devient industrielle c’est une tout autre histoire

LAISSER UN COMMENTAIRE

S'il vous plaît entrez votre commentaire!
S'il vous plaît entrez votre nom ici